查询时请注意选择相应的产品编号
| 发光细菌的试验：海洋发光细菌和淡水发光菌法 | |||
|---|---|---|---|
|
发光细菌作为毒性检测的生物学方法，因其简便、快速、灵敏且成本较低而日益受到重视。本试验项目推荐两个方法。一为国家环境保护局于1995年发布的发光细菌法（GB/T15441-1995)，采用的是海洋发光细菌菌种；二为淡水发光菌法，采用的是淡水型发光菌种。
明亮发光杆菌T3法（A)
本方法适用工业废水、纳污水体及实验室条件下，可溶性化学物质的水质急性毒性监测。
1．原理
基于发光细菌相对发光度与水样毒性组分总浓度呈显著负相关（P≤0.05)，因而可通过生物发光光度计测定水样的相对发光度，以此表示其急性水平。
水质急性毒性水平可按选用相当的参比物氯化汞浓度（以mg/L为单位）来表征，或选用EC50值（半数有效浓度，以样品液百分浓度为单位）来表征。
2．样品的采集与保存
①采样瓶使用聚四氟乙烯衬垫的玻璃瓶，务必清洁、干燥。采集水样时，瓶内应充满水样不留空气。采样后，用塑胶带将瓶口密封。
②毒性测定应在采样后6h内进行。否则应在2-5℃下保存样品，但不得超过24h。报告中应写明水样采集时间和测定时间。
③对于含固体悬浮物的样品须离心或过滤去除，以免干扰测定。
3．仪器设备
①生物发光光度计：配置2ml或5ml测试管。
当氯化汞标准溶液浓度为0.10mg/L时，发光细菌的相对发光度为50%，其误差不超过±10%。
②2ml或5ml测试样品管（具标准磨口塞，为制造比色管的玻璃料制作，由专业玻璃仪器厂制造），分别适用于相应型号的生物发光光度计。
③微量注射器：10μl。
④注射器：lml。
⑤定量加液瓶：5ml。
⑥吸管：2ml、10m1、25ml。
⑦试剂瓶：l00ml。
⑧量筒：100ml,500ml。
⑨棕色容量瓶：50ml、250ml、1000ml。
⑩半微量滴定管（配磨口试液瓶，全套仪器均为棕色）：l0ml。
4．试剂和材料
除另有说明外，本方法所用试剂均应为符合国家标准的分析纯试剂、蒸馏水或同等纯度的水。
①氯化汞HgCl2。
②氯化钠NaCl，化学纯。
③明亮发光杆菌T3小种（PhotobacteriumphosphoreumT3spp.）冻干粉，安瓶瓶包装，每瓶0.5g，在2-5℃冰箱内有效保存期为6个月。新制备的发光细菌休眠细胞（冻干粉）密度不低于每克800万个细胞；当按5(3)④步骤将冻干粉复苏2min后即发光（可在暗室内检验，肉眼应见微光），稀释成工作液后每毫升菌液不低于1.6万个细胞（(5ml测试管）或2万个细胞（2ml测试管）（均为稀释平板法测定）。在生物发光光度计上测出的初始发光量应在600-1900mV之间，低于600mV允许将倍率调至“×2”档，高于1900mV允许将倍率调整至“×0.5”档。仍达不到标准者，更换冻干粉。
④氯化钠溶液，3g/100m1：氯化钠3g于玻璃容器内，用量筒加蒸馏水l00ml。
⑤氯化钠溶液，2g/l00ml氯化钠2g，加蒸馏水l00ml于试剂瓶内，2-5℃保存。
⑥参比物氯化汞标准溶液：0.02、0.04、0.06、0.08、0.10、0.12、0.14、0.18、0.20、0.22、0.24mg/L。
⑦氯化汞母液，ρ=2000mg/L:1/万分析天平精称密封保存良好的无结晶水氯化汞0.1000g于50ml容量瓶中，用3g/100m1氯化钠溶液稀释至刻度，置2-5℃冰箱备用，保存期6个月。
⑧氯化汞工作液，ρ=2mg/L：用移液管吸氯化汞2000mg/L母液l0ml于l000ml容量瓶中，用3g/l00ml氯化钠溶液定容。再用移液管吸取氯化汞20mg/L液25ml于250m1容量瓶中，用3g/l00m]氯化钠溶液定容。将此液倒入配有半微量滴定管的试液瓶，然后用3g/l00ml氯化钠溶液将氯化汞2mg/L溶液按表5-3-6稀释成系列浓度（一律采用50ml容量瓶）。氯化汞工作液保存期不能超过24h，超过者务必重配。
5.试验程序
(1)稀释样品液
①样品液测定前稀释的条件：
样品液预试验：取事先加氯化钠至3g/l00ml浓度的样品母液2m1装入样品管，并设一支CK管（氯化钠3g/100m1溶液），按4②一③所述测定相对发光度。
若测得的样品，相对发光度低于50％乃至零，欲以EC50表达结果，则需稀释。
若测得的样品，相对发光度在1％以上，欲以与相对发光度相当的氯化汞浓度表达结果，则不需稀释。
②样品液的稀释液：样品液的稀释液一律用蒸馏水，在定容前一律按构成氯化钠3g/100ml的浓度添加氯化钠或浓溶液（母液只能加固体）。
③样品液稀释浓度的选择：
预试验：按对数系列将样品液稀释成五个浓度：100%、10%、1%、0.1%、0.01%（其对数依次为0、-1、-2、-3、-4)，按5(2）和5(3）所述粗测一遍，视1％-100%相对发光度落在哪一浓度范围。
正式试验：在1%-100％相对发光度所落在的浓度范围内增配到6-9个浓度（例如，若落在0.1％-10％之间，则应稀释成0.1%、0.25%、0.5%、0.75%、1%、2.5%、5%、7.5%、10%；若落在1％-10％之间，则应稀释成1%、2%、4%、6%、8%、10%)，按5(2）-(3)所述再测一遍；这6-9个浓度，也可通过查对数表，按等对数间距原则自行确定（例如，若落在1％-10％之间，则应稀释成10%、6.31%、3.98%、2.51%、1.58%、1.00%其对数相应为1.00、0.80、0.60、0.40、0.20、0.00，对数间距均为0.2)。
(2)测定条件
①室温：20-25℃。
同一批样品在测定过程中要求温度波动不超过±1℃，且所有测试器皿及试剂、溶液测前1h均置于控温的测试室内。
②pH：若需测定包括pH影响在内的急性毒性，不应调节待测样品pH。
若需测定排除pH影响在内的急性毒性，需在测定前将待测样品和CK（氯化钠3g/100m1）的pH调至下值：主要含Cu的水样为4.5，主要含其他金属的水样为5.4，主要含有机化合物的水样为7.0。
③溶解氧：本法只能测定包括溶解氧影响在内的急性毒性。
(3)测定步骤
①试管的排列：于塑料或铁制试管架上按以下两种情况排列测试管。
a．按5(1)①所述，样品母液相对发光度为1％以上者，如下排列：
左侧放参比物氯化汞系列浓度溶液管，右侧放样品管。前排放氯化汞溶液和样品管，后一排放对照（CK）管，后二排放CK预试验管。每管氯化汞或样品液均配一管CK（氯化钠3g/100m1蒸馏水溶液）。设三次重复。每测一批样品，均需同时配置测定系列浓度氯化汞标准溶液。
b．按5(1)①所述，样品母液相对发光度为50％以下乃至零者，如下排列：
左侧仅放氯化汞0.10mg/L溶液管（作为检验发光细菌活性是否正常的参比物浓度，其反应15min后的相对发光度应在50％左右），右侧放样品稀释液管（从低浓度到高浓度依次排列）。其他同a。每测一批样品，均需同时配测氯化汞0.10mg/L溶液。
②加3g/l00ml氯化钠溶液：用5ml的定量加液瓶给每支CK管加2m1或5ml氯化钠3g/l00ml（据仪器型号而定）。
③加样品液：用2ml或5ml吸管给每支样品管加2ml或5ml样品液（据5(3)②而定）。每个样品号换一支吸管。
④发光细菌冻干菌剂复苏
从冰箱冷藏室2-5℃取出含有0.5g发光细菌冻干粉的安瓿瓶和氯化钠溶液，投入置有冰块1-1.5L保温瓶，用lml注射器吸取0.5m1冷的氯化钠2g/l00m1（适用于5ml测试管）或lml冷的2.5%氯化钠（适用于2m1测试管）注入已开口的冻干粉安瓿瓶，务必充分混匀。2min后菌即复苏发光（可在暗室内检验，肉眼应见微光）。备用。
⑤仪器的预热和调零：打开生物发光光度计电源，预热15min，调零，备用。
⑧检验复苏发光细菌冻千粉质量：另取一空2m1或5ml测试管加2m1或5ml氯化钠3g/100ml（据5(3)②而定），加10μ1复发光菌液，盖上瓶塞，用手颠倒五次以达均匀。拔去瓶塞，将该管放入各自型号仪器测试舱内，若发光量立即显示（或经过5-l0min上升到）600mV以上，此瓶冻干粉可用于测试，低于者按4③处理。菌液发光量先缓慢上升，约持续5-15min，后缓慢下降，约持续4h。满4h的CK发光量应不低于400mV，低于者更换冻干粉。
⑦给各测试管加复苏菌液：在发光菌液复苏稳定（约0.5h)后，按5(3)所述，从左到右，按氯化汞或样品管（前）-CK管（后）一氯化汞或样品管（前）-CK管（后）…顺序，用10μl微量注射器（勿用定量加液器以减少误差）准确吸取10μl复苏菌液，逐一加入各管，盖上瓶塞，用手颠倒五次，拔去瓶塞，放回原位（每管加菌液间隔时间勿短于30s。每管在加菌液的当时务必精确计时，记录到秒，即为样品与发光菌反应起始时间。立即将此时间加15min，记作各管反应终止（即应该读发光量）的时间。
⑧发光细菌与样品反应达到终止时间的读数：按各管原来加菌液的先后顺序，当某管达到记录的反应终止时间，在不加瓶塞的情况下，立即将测试管放入仪器测试舱，读出其发光量（以光信号转化的电信号一电压毫伏数表示）。
⑨有色样品测定干扰的校正：
a．拿掉仪器样品舱上的黑色塑料管口；
b．取－2m1测试管（直径12mm)，加氯化钠3g/ml溶液2m1，将该管放进一装有少量氯化钠3g/100m1溶液的5ml管（直径20mm）内，要使外管与内管的氯化钠3g/l00ml液面平齐。此作CK管；
c．另取一2ml测试管，加氯化钠3g/ml溶液2ml，放入另一装有少量有色待测样品液的5ml管内，要使外管与内管的氯化钠3g/ml液面平齐。此作CKc管；
d．于CK和CKc二管的内管中同时加复苏发光菌液10μ1（注意：必须是本批样品测
定所用同一瓶复苏菌液），立即记时到秒，等反应满15min，迅速放入仪器测试舱，测定两支带有内管的5ml测试管的发光量。分别记下发光量Ll(CK管）和L2(CKc管）；
e．计算因颜色引起的发光量（mV）校正值ΔL=L1一L2；
f.按5(3)⑦和5(3)⑧所述常规步骤测试带色样品管及其CK管（氯化钠3g/l00ml溶液）的发光量（mV)。所有CK管测得之发光量（mV）均须减去校正值ΔL(mV）后才能作为CK发光量（mV)。
有色样品溶液测定干扰的校正示意图见图5-3-1。
6．质量保证与质量控制
①每支发光菌的发光强度和稳定性不尽相同，同批样品测定过程中应使用同一支发光菌，如果需做氯化汞标准曲线，也应与样品使用同一支发光菌。如果一支不够用，可采用同批的两支混合后使用。
②国际上一般通用反应时间为5min或15min两种，鉴于我国目前所用发光杆菌的灵敏度和稳定性，采用15min。
③三次重复测定结果相对偏差确定为≤1％。
④测定应在采集样品后立即进行，在6h内不能测定应低温保存，但不得超过24h。
⑤关于样品如何稀释的问题，一般根据样品毒性大小决定，但是在试验中至少要选择六个不同浓度。如果六个浓度的相对发光度在1%-100％之外，可增配若干个浓度，使之落在1%-100％相对发光度范围内，以求相关方程。
⑥如果样品浓度为最高极限浓度（即100%）时，其相对发光率都不能使发光强度减少50%，则对样品的EC50值只能示为＞100%。
⑦鉴于发光细菌法实验因素的影响，实验结果具有一定误差。在评价毒物的剂量一效应关系时，应确定95％置信区间，即T=a+bC±2SE（SE为剩余标准差），以此求出的EC50也有一定的区间，可根据这些结果确定实验结果的准确性和真实性。对于实验结果的重现性，就大多数而言，一般EC50值的变异系数在6％-10%。
7.测试结果的表达
1)计算样品相对发光度（％），并算出平均值：
相对发光度（%)=氯化汞管或样品管发光量（mV)/CK管发光量（mV)×100
相对发光度（％）平均值＝（重复1）（%）+（重复2）（%）+（重复3）（%）/3
2）符合5(1)①中样品母液相对发光度在1％以上者，建立并检验氯化汞浓度（C)与其相对发光度（T，％）均值的相关方程，也可以绘制关系曲线。
①求出一元一次线性回归方程的a（截距）、b（斜率、回归系数）和r（相关系数），列出方程：
T=a+bC氯化汞
查相关系数显著水平（P值）表，检验所求r值的显著水平。若P≤0.01，且EC50氯化汞=0.lomg/L±0.02mg/L，则所求相关方程成立；反之，不能成立，必须重测系列氯化汞浓度的发光量。氯化汞溶液配制过夜者，必须重配后再测定。
②也可以据建立的上述方程绘制关系曲线。即指定发光度为10％和90%，代入上式，求出相应的二个氯化汞浓度，在常数坐标纸上，定出二点，画一直线，即为符合该方程的氯化汞浓度与相对发光度的关系曲线。
3)符合5(1)①中样品母液相对发光度低于50％乃至零，欲以EC50表示结果者，建立并检验样品稀释浓度（C）与其相对发光度（T)均值的相关方程，绘制关系曲线。
按7之2)所述方法建立相关方程T=a+bC样，并检验相关系数r、显著水平（P值）。
若P≤0.05，则所求相关方程成立；反之，不能成立，必须重测样品稀释系列浓度的发光量。
8．结果评价和报告
(1)用氯化汞浓度表达样品毒性
1)适用的条件：符合条件（样品母液相对发光度＞1%）并按7之2)建立了合格（(P≤0.01、EC50氯化汞=0.10mg/L±0.02mg/L）的氯化汞浓度与其相对发光度相关方程者。
2）表达方法：
①将测得的样品相对发光度，代入7之2)的相关方程，求出与样品急性毒性相当的氯化汞浓度（一般用mg/L）表示。
②测试结果报告同时列举样品相对发光度及其相当的氯化汞浓度值。
3)适用性：适用于相对发光度在1％以上，特别是50％以上（即不可能出现EC50值）但低于100%（即仍有中、低水平毒性）的样品毒性测定。
(2)用EC50值表达样品毒性
1)适用的条件：符合条件（样品母液相对发光度低于50％乃至零）并按7之3)建立了合格（P≤0.01）的样品稀释液浓度与其相对发光度相关方程者。
2）表达方法：
①将T代入7之3)建立的相关方程，求出样品的EC50值。这里的EC50值以样品的稀释浓度（一般用百分浓度）表示。
②测试结果报告列举样品的EC50值。
3）适用性：适用于相对发光度在50％以下，特别是零（即毒性水平较高或很高）的样品毒性测定，后者无法以相当的氯化汞浓度表达毒性。
(3）测定记录格式（见表5-3-8)
(4）测定结果报告
①实验室室温。
②采样地点、日期、时间。
③氯化汞浓度或样品稀释百分浓度与相对发光度的相关方程：
T=a+bC
r= P≤ EC50氯化汞= mg/L
L=a+bC a= b=
回归方程 r= P＜
④样品EC50值（稀释百分浓度）或相对发光度（％）及相当的氯化汞浓度（mg/L）。
|
| 上一篇：各向异性效应是影响化学位移很重要的因素 | 下一篇：日本水俣病事件应该让我们重视化学试剂的泄露 |
|---|
无法在这个位置找到： xy/left.htm